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Quelles sont ces étoiles dans mon image microscopique ?

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Je vois ces motifs très curieux sur le côté exposé au soleil d'un jasmin (probablement) feuille - visible avec un microscope de fortune (environ 50x)

Quels sont-ils? Pores ? Existe-t-il d'autres plantes avec des textures similaires ?

Le microscope est composé d'une webcam, comme décrit ici


Malgré une faible résolution, je dirais que ce sont des trichomes. Jasmin est un genre qui produit des huiles essentielles, il a donc des poils glandulaires et d'autres trichomes qui aident à retenir la couche d'huile.

Source : http://cms.herbalgram.org/herbalgram/issue53/article2207.html?ts=1376643526&signature=b4349f7f3ca6f6a47823f4754237eaac

L'image affichée ci-dessus montre des trichomes glandulaires et non glandulaires dans la lavande montrés par microscopie électronique à balayage. J'ai peur de ne rien trouver sur Jasmin en particulier, mais je pense que ce doit être le même genre de structure.


  • Le grossissement est la capacité de faire paraître de petits objets plus gros, par exemple en rendant visible un organisme microscopique.
  • La résolution est la capacité de distinguer deux objets l'un de l'autre.
  • La microscopie optique a des limites à la fois dans sa résolution et son grossissement.
  • disques aérés: En optique, le disque d'Airy (ou disque d'Airy) et le motif d'Airy sont des descriptions de la tache lumineuse la mieux focalisée qu'un objectif parfait avec une ouverture circulaire peut faire, limité par la diffraction de la lumière.
  • diffraction: éclatement d'une onde électromagnétique lors de son passage dans une structure géométrique (par exemple, une fente), suivie de la reconstruction de l'onde par interférence

Le grossissement est le processus d'agrandissement de quelque chose uniquement en apparence, pas en taille physique. Cet agrandissement est quantifié par un nombre calculé également appelé &ldquomagnification. &rdquo Le terme grossissement est souvent confondu avec le terme &ldquorésolution,&rdquo qui décrit la capacité d'un système d'imagerie à montrer les détails de l'objet en cours d'imagerie. Bien qu'un grossissement élevé sans haute résolution puisse rendre visibles de très petits microbes, il ne permettra pas à l'observateur de distinguerentre microbes ou parties subcellulaires d'un microbe. En réalité, par conséquent, les microbiologistes dépendent davantage de la résolution, car ils veulent pouvoir déterminer les différences entre les microbes ou des parties de microbes. Cependant, pour pouvoir distinguer deux objets au microscope, un spectateur doit d'abord agrandir jusqu'à un point auquel la résolution devient pertinente.

La résolution dépend de la distance entre deux points rayonnants distincts. Un système d'imagerie microscopique peut avoir de nombreux composants individuels, y compris une lentille et des composants d'enregistrement et d'affichage. Chacun d'eux contribue à la résolution optique du système, tout comme l'environnement dans lequel l'imagerie est réalisée. Les systèmes optiques réels sont complexes et les difficultés pratiques augmentent souvent la distance entre les sources ponctuelles distinguables.

À des grossissements très élevés avec la lumière transmise, les objets ponctuels sont considérés comme des disques flous entourés d'anneaux de diffraction. Ceux-ci sont appelés disques Airy. Le pouvoir de résolution d'un microscope est considéré comme la capacité de distinguer deux disques d'Airy étroitement espacés (ou, en d'autres termes, la capacité du microscope à révéler distinctement les détails structurels adjacents). C'est cet effet de diffraction qui limite la capacité d'un microscope à résoudre des détails fins. L'étendue et l'amplitude des diagrammes de diffraction sont affectées par la longueur d'onde de la lumière (&lambda), les matériaux réfractifs utilisés pour fabriquer l'objectif et l'ouverture numérique (NA) de l'objectif. Il y a donc une limite finie au-delà de laquelle il est impossible de résoudre des points séparés dans le champ objectif. C'est ce qu'on appelle la limite de diffraction.


Il y a plus de virus sur Terre que d'étoiles dans l'Univers

Avec le coronavirus SARS-CoV-2 dans tous les esprits ces jours-ci, les scientifiques s'efforcent de comprendre ses caractéristiques. Tung Phan de l'Université de Pittburgh, par exemple, a trouvé de nombreuses mutations dans le génome du virus, soulignant sa diversité génétique et l'évolution rapide dont ce pathogène est capable.

Cela soulève de plus grandes questions, mais comme ce qui rend les virus si adaptables, et sont-ils vraiment « vivants ? »

Premièrement, leur nombre total est stupéfiant. On estime qu'il existe 10 virus pour chaque bactérie sur Terre. Curtis Suttle de l'Université de la Colombie-Britannique à Vancouver a comparé le nombre de virus dans les seuls océans au nombre d'étoiles dans l'Univers, qui est estimé à 10 23 . Les virus sont 10 millions plus nombreux que les étoiles. Si vous les aligniez tous, cette ligne mesurerait 10 millions d'années-lumière ! Pour le mettre à une échelle plus concevable, il a été estimé que chaque jour, plus de 700 millions de virus, principalement d'origine marine, sont déposés de l'atmosphère terrestre sur chaque mètre carré de la surface de notre planète.

La diversité des virus est tout aussi impressionnante. Certains utilisent l'ADN pour transmettre des informations génétiques, certains utilisent l'ARN et certains utilisent les deux au cours de leur cycle de vie. Le support d'informations peut être simple brin, double brin ou double brin, certaines régions étant simple brin. Les virus sont comme un laboratoire naturel jouant apparemment avec des permutations et des combinaisons génétiques. Alors que la plupart des virus sont si petits qu'ils ne peuvent être observés directement qu'au microscope électronique, d'autres, comme les Mimivirus géants, atteignent la taille d'une bactérie. Lorsque je travaillais dans mon laboratoire avec des virus qui tuent les bactéries appelées bactériophages, nous ne comptions pas les virus réels, mais le nombre de bactéries qu'ils tuaient.

Les virus ont aussi des avantages. La plupart des informations génétiques sur Terre y résident probablement, et les virus sont importants pour transférer des gènes entre différentes espèces, augmenter la diversité génétique et, finalement, améliorer l'évolution et l'adaptation de divers organismes aux nouveaux défis environnementaux. Lorsque la vie est apparue pour la première fois sur Terre, elles ont peut-être joué un rôle essentiel dans l'évolution des premières cellules. J'imagine une sorte d'étang darwinien primitif dans lequel les virus et les premières cellules ont échangé des gènes les uns avec les autres, presque sans entrave, pour proposer de nouvelles adaptations critiques, améliorant la survie des deux dans des conditions difficiles de la Terre primitive.

Cela dépend de l'endroit où nous traçons la frontière entre la non-vie et la vie, ce qui est probablement un continuum vers une complexité croissante. La vie a-t-elle besoin de cellules ? Personnellement, je pense que c'est un peu & comment devrais-je le dire ?–centré sur la cellule plutôt que centré sur la Terre. À mon avis, les virus doivent être comptés comme vivants. Nous devrions les reconnaître comme un quatrième domaine de la vie et ne pas les rejeter, ne serait-ce que parce qu'ils se reproduisent en fait en dehors de leur propre « corps ». Les bactéries parasitaires qui causent la chlamydia sont considérées comme vivantes. Une hypothèse sur l'origine des virus dit qu'ils, ou au moins certains d'entre eux, pourraient avoir évolué à partir de bactéries qui ont perdu tous les gènes non nécessaires au parasitisme. Si c'est le cas, pourrions-nous dire qu'ils sont passés de la vie à la non-vie ?

Une autre chose que je trouve intrigante : les virus à ARN les plus courants comme le coronavirus à l'origine de la pandémie actuelle ont généralement des tailles de génome plus petites que les virus à ADN, apparemment en raison d'un taux d'erreur plus élevé lors de la réplication. Trop d'erreurs ont pour effet que la sélection naturelle les défavorise. Il limite également la taille maximale de ces virus.

Cela semble corroborer l'hypothèse selon laquelle la vie est née d'un monde d'ARN et que, pour une vie très primitive, l'ARN fonctionnait parfaitement pour transmettre l'information génétique. À mesure que les organismes grandissaient, ils avaient besoin de génomes plus gros et devaient transférer plus d'informations. À ce stade, l'ADN a supplanté l'ARN en tant que type de code d'information. Mais l'ARN survit en tant qu'élément essentiel de la biologie terrestre, comme nous le voyons avec le coronavirus SARS-CoV-2.

À propos de Dirk Schulze-Makuch

Dirk Schulze-Makuch est professeur à l'Université technique de Berlin, en Allemagne, et professeur auxiliaire à l'Arizona State University et à la Washington State University. Il a publié huit livres et près de 200 articles scientifiques liés à l'astrobiologie et à l'habitabilité planétaire. Ses derniers livres sont Le zoo cosmique : une vie complexe sur de nombreux mondes et la 3e édition de La vie dans l'univers : attentes et contraintes.


Images de microscope à différents grossissements

Avez-vous besoin d'exemples d'images à différents grossissements au microscope ?

Les différentes images ci-dessous ont été prises avec deux types de microscopes différents. Les images du bois de Paulownia, des cheveux et du sang de grenouille ont été capturées avec un microscope composé à haute puissance utilisant un adaptateur pour appareil photo Nikon. Le microscope composé a généralement trois ou quatre grossissements - 40x, 100x, 400x et parfois 1000x.

  • Avec un grossissement de 40x, vous pourrez voir 5 mm.
  • Avec un grossissement de 100x, vous pourrez voir 2 mm.
  • Avec un grossissement de 400x, vous pourrez voir 0,45 mm ou 450 microns.
  • Avec un grossissement de 1000x, vous pourrez voir 0,180 mm ou 180 microns.

Les images prises du tournesol avec la nymphe ont été prises avec un microscope à faible grossissement ou stéréo. Un stéréomicroscope est un bon instrument pour voir des insectes, des pièces de monnaie, des feuilles ou tout ce que vous pourriez tenir dans la paume de votre main, mais dont vous avez besoin de voir plus de détails sur l'objet. Les images du papillon ont été prises à l'aide d'un appareil photo OIympus utilisant un adaptateur d'appareil photo reflex numérique.

Bois de paulownia sous un microscope composé

Bois de Paulownia c.t. (la Coupe transversale)
sous un microscope composé

Bois de Paulownia c.t.
sous un microscope composé

Bois de Paulownia c.t.
sous un microscope composé

Bois de Paulownia c.t.
sous un microscope composé

Ces images sont une gracieuseté de Robert Lavigne. Les paulownia sont des arbres à feuilles caduques originaires d'une grande partie de la Chine. L'arbre Paulownia fortunei est un arbre à croissance rapide qui est souvent cultivé commercialement pour la production de bois de feuillus. Vous trouverez plus d'informations sur le bois de Paulownia ici.

Cheveux humains sous un microscope composé

Cheveux humains sous un microscope composé

Cheveux humains sous un microscope composé

Cheveux humains sous un microscope composé

Sang de grenouille sous un microscope composé

Sang de grenouille sous un microscope composé
(Microscope biologique modèle MT5000)

Sang de grenouille sous un microscope composé
(Microscope biologique modèle MT5000)


Godfrey Hounsfield et Allan Cormack développent le scanner de tomographie axiale informatisée (CAT). À l'aide d'un ordinateur, l'appareil combine de nombreuses images radiographiques pour générer des vues en coupe ainsi que des images tridimensionnelles d'organes et de structures internes.

John Venables et CJ Harland observent des motifs de rétrodiffusion d'électrons (EBSP) au microscope électronique à balayage. EBSP fournit des informations microstructurales quantitatives sur la nature cristallographique des métaux, des minéraux, des semi-conducteurs et des céramiques.


Images trompeuses en biologie cellulaire

Une image typique, créée à partir de plusieurs images microscopiques. Crédit : TU Vienne

La lumière ne peut pas être utilisée pour imager des structures plus petites que la moitié de sa longueur d'onde - pendant longtemps, cela a été considéré comme la limite de résolution ultime en microscopie optique. Le développement de la microscopie à superrésolution a cependant montré qu'il existe certaines failles à cette règle. En imageant des molécules individuelles à différents moments, leurs positions exactes peuvent éventuellement être combinées en une image claire. En 2014, le prix Nobel de chimie a été décerné pour cette idée. Depuis lors, les techniques de microscopie à superrésolution, telles que STORM et PALM, sont devenues des méthodes populaires pour étudier l'organisation des protéines dans la membrane cellulaire.

Étonnamment, de nombreux groupes de recherche ont découvert que pratiquement toutes les protéines étudiées forment des amas dans la membrane cellulaire. Au cours de leurs travaux sur de tels clusters de protéines, les chercheurs de la TU Wien ont fait une découverte inattendue. Souvent, les amas présumés sont en fait des molécules clignotantes uniques, qui sont comptées plusieurs fois. Une nouvelle méthode, que l'équipe vient de présenter dans la revue Méthodes naturelles, peut distinguer les vrais clusters de tels artefacts.

Imagerie moderne pour la biologie cellulaire

"Pour de nombreux problèmes importants en médecine et en biologie, il est crucial de comprendre la structure de la membrane cellulaire", explique Florian Baumgart de l'équipe de recherche en biophysique dirigée par le professeur Gerhard Schütz à la TU Wien. "La microscopie à superrésolution est un outil idéal pour étudier l'arrangement spatial des protéines sur la membrane cellulaire. Nos recherches se concentrent sur les cellules T, qui peuvent reconnaître les antigènes et jouent donc un rôle important dans notre système immunitaire."

Afin d'appliquer la microscopie à superrésolution aux échantillons biologiques, les protéines sont marquées avec des molécules fluorescentes (appelées fluorophores). En microscopie à fluorescence classique, un seul fluorophore n'est pas visible sous la forme d'un point clair, mais sous la forme d'un cercle délavé. Par conséquent, si toutes ces molécules s'allument simultanément, leurs images se chevauchent et l'information sur leur disposition spatiale exacte est perdue. En utilisant des astuces chimiques ou des protocoles d'éclairage spéciaux, les fluorophores peuvent être amenés à s'allumer à différents moments. Une série de photos est prise, sur chacune desquelles seuls quelques fluorophores bien séparés sont visibles. Par la suite, un programme informatique détermine la position exacte des molécules sur chaque image. Cela permet enfin de reconstruire une image haute résolution à partir de toutes les positions de molécules individuelles déterminées.

Florian Baumgart au labo. Crédit : TU Vienne

« Ces dernières années, divers groupes de recherche ont étudié la façon dont les protéines sont distribuées sur les membranes cellulaires. À maintes reprises, ils ont constaté que presque toutes les protéines forment des grappes, plutôt que d'assumer des positions aléatoires », explique Florian Baumgart.

À première vue, cela semble raisonnable. Il est bien connu que lors de la reconnaissance de l'antigène, les cellules T peuvent créer des amas de protéines stables qui sont suffisamment grands pour être vus même avec la microscopie à fluorescence classique. De minuscules amas de protéines nanoscopiques étaient considérés comme des précurseurs de ces structures plus grandes - avec une grande importance pour la fonction des cellules T.

Florian Baumgart était également à la recherche de ces nanoclusters. Mais la microscopie à superrésolution est une affaire compliquée avec de nombreuses sources d'erreurs possibles. Les données doivent être évaluées avec soin pour obtenir des résultats fiables. Parfois, les molécules peuvent s'allumer plusieurs fois, ce qui peut facilement être confondu avec un groupe de molécules.

« Nous avons réfléchi à la façon dont nous pourrions distinguer des amas de molécules qui brillent alternativement d'une seule molécule qui clignote à plusieurs reprises », explique Florian Baumgart. L'idée décisive était de faire varier la concentration des fluorophores. "Sur les images, les grappes et les molécules clignotantes peuvent être difficiles à distinguer, mais les propriétés statistiques de la distribution sont différentes lorsque nous augmentons la concentration en fluorophore." Si les molécules marquées forment des amas, de plus en plus de positions de molécules deviennent visibles, lorsque des quantités croissantes de marqueurs fluorescents sont utilisées. Mais entre les grappes, des espaces sombres subsistent. Si, en revanche, ce sont des molécules réparties aléatoirement qui s'éclairent plusieurs fois, un nombre croissant de molécules fluorescentes finira par recouvrir toute la surface, sans former d'amas dans une région spécifique.

"De cette façon, nous avons découvert que les protéines membranaires qui nous intéressent ne forment pas du tout des clusters - cette théorie doit être rejetée", explique Florian Baumgart. "Il existe cependant des exemples de protéines qui forment effectivement des clusters. Nous pourrions montrer que les images de ces protéines ont des propriétés statistiques assez différentes."

Cette méthode de distinction des clusters et des molécules clignotantes vient d'être publiée dans la revue "Natures Methods". Il devrait aider à l'interprétation des données de superrésolution et pourrait devenir un outil important pour aider à la compréhension de l'organisation structurelle de la membrane plasmique.


Microscopes numériques à main

Plusieurs de mes critiques se concentrent sur les microscopes portables (jeu de mots). Ce sont de petits appareils portables qui, comme leur nom l'indique, peuvent être tenus dans votre main et facilement déplacés sur un spécimen.

Ces lunettes sont parfaites pour les enfants du primaire. Ils encouragent les jeunes enfants à explorer leur monde de manière amusante et informative.

Voici mes choix pour le meilleur du groupe.

1. Écran LCD couleur de 4,3 pouces Koolertron →

La lunette USB numérique LCD couleur Koolertron de 4,3 pouces est un appareil numérique à prix modéré avec un éclairage, une clarté et une mise au point superbes qui vous permettent de tout voir, des pièces de monnaie aux cheveux en passant par les mille-pattes.

Sa petite taille le rend parfait pour un enfant, et il peut être facilement retiré de la base et transporté pour explorer n'importe quel endroit.

Ils peuvent même être capables de l'étudier par eux-mêmes, ce qui pourrait également leur donner un sentiment d'accomplissement. Cependant, vous devrez garder une trace de la batterie, qui ne tient la charge que pendant environ deux heures.

  • Cet appareil est facile à utiliser. Il peut être installé en quelques minutes et est très adapté aux enfants pour les cours de sciences fondamentales.
  • Le Koolertron produit d'excellentes images. Pour son prix, vous pouvez voir des détails surprenants dans les spécimens.
  • La base est en plastique fragile. Il peut être difficile de maintenir l'instrument droit et d'éviter que les objets ne deviennent flous. Cela pourrait également être un problème autour de petites mains curieuses.
  • Lors de la mise sous tension initiale, l'affichage à l'écran était étonnamment en chinois. Il n'y a pas d'instructions dans le livret d'utilisation sur la façon de changer l'écran en anglais, et le CD de démarrage est en chinois.

Pour cette raison, la configuration de l'instrument est une conjecture.

Bonus que j'ai trouvé:

  • J'aime que vous puissiez simplement prendre une image puis la mettre sur une carte. Cela permet un transfert facile à la fois à l'intérieur et à l'extérieur de l'école.
  • Le microscope a un grand écran LCD. Ceci est utile si vous avez des problèmes de vision. Il est également efficace si vous lisez plus facilement lorsque quelque chose est à plus grande échelle.

Je recommande de regarder cette vidéo de Product Overviews pour une démonstration facile à suivre du Koolertron 4,3 pouces. Pas de mots fantaisistes, juste un tutoriel clair. Si vous êtes intéressé par un grossissement puissant, le présentateur montre comment une gravure de la taille d'une tête d'épingle sur une pièce devient complètement lisible avec cette lunette.

Meilleur pour: Le Koolertron est idéal pour les enfants qui s'initient au monde des microscopes. C'est un appareil simple et direct qui est amusant et facile à apprendre. C'est aussi une portée qui peut être utilisée en toute sécurité et de manière indépendante.

2. USB 2.0 enfichable →

Le modèle Plugable USB 2.0 est un autre oscilloscope numérique portable d'entrée de gamme qui est vraiment plug and play. Contrairement au Koolertron, il possède un diffuseur de lumière utile qui neutralise l'éblouissement. Ceci est très utile si vous regardez des objets brillants tels que des pièces de monnaie. Si vous souhaitez l'utiliser sur son support, il est équipé d'un col de cygne qui permet d'examiner les objets sous n'importe quel angle. Il n'a cependant pas la capacité d'analyser des lames avec des lamelles.

  • Plugable a un excellent service client. Ils répondent souvent dans l'heure et restent avec vous aussi longtemps qu'il le faut pour résoudre votre problème. J'ai personnellement eu un problème avec la portée, et le représentant était aimable et patient. Il est resté avec moi pendant 40 minutes jusqu'à ce que le problème soit réglé.
  • Ce modèle offre un excellent rapport qualité-prix. Avec elle, vous pouvez avoir une portée de qualité, même si vous avez un budget limité. Il fonctionne aussi bien que certains modèles plus chers.
  • L'appareil photo de l'appareil n'a pas de véritable fonction de zoom. Au lieu de cela, vous devez modifier manuellement la distance par rapport à l'échantillon, puis refaire la mise au point. Ce processus peut devenir très aggravant si vous devez le faire pendant une longue période.
  • Il n'atteint pas le grossissement 250x annoncé par le fabricant. Au maximum, c'est probablement plus comme 50x.

Bonus que j'ai trouvé:

  • Fonction Time Lapse. Le laps de temps ajoute une autre dimension intéressante aux études de spécimens. Cette fonctionnalité offre des options pour la durée du laps de temps et le nombre de prises de vue par minute.
  • Bouton tactile capacitif. Un bouton tactile capacitif est celui qui capture des images au moindre toucher. Cela aide le Plugable à obtenir des images sans flou qui seraient autrement gâchées par des chocs ou des mains tremblantes lorsque vous appuyez sur un bouton avec force.

Pour vous donner une meilleure idée de la façon dont une version chère n'est pas nécessairement la meilleure portée, consultez cette critique de Robert Cohen. Il oppose le Plugable à 39,95 $ à un modèle à 80 $, et le Plugable est le surprenant vainqueur. Contrairement au Plugable, l'autre est embourbé par tout, de la mauvaise résolution à la longue configuration au décalage lors du changement de mise au point.

Meilleur pour: Cette lunette est idéale pour les salles de classe où les petits enfants peuvent la casser ou la renverser. S'il est endommagé, il n'y a rien à craindre, car il est facile et peu coûteux à remplacer.

3. Celestron 5 MP Pro →

La durabilité et la simplicité de cette lunette portable la rendent idéale pour faire des démonstrations pour les enseignants en classe. C'est un appareil à faible grossissement qui révélera aux enfants les structures de base des spécimens, plutôt que des détails en profondeur. Comme il dispose d'un port USB, il peut se connecter à un ordinateur pour que toute la classe puisse profiter des images.

Sa capacité à prendre une capture d'écran est également très utile, qui peut être explorée par toute la classe à la fois. Lorsqu'il est connecté à un grand écran d'ordinateur, tous les enfants pourront voir la même image et en avoir une plus grande vue.

  • Le Celestron a une bonne plage de grossissement. Vous pouvez facilement tout identifier, d'une grosse araignée à une puce, ou même plus petite.
  • Cet instrument a une bonne profondeur de champ. Il donne vie à un objet et fournit une vue détaillée du premier plan et de l'arrière-plan d'un spécimen.
  • Le logiciel du Celestron 5MP ajuste automatiquement la luminosité. Il n'y a aucun moyen de remplacer ou de modifier cette fonctionnalité. Au lieu de cela, vous devez utiliser votre propre éclairage ambiant si la luminosité automatique n'est pas celle que vous souhaitez.
  • La fonction de zoom est difficile à utiliser. Vous devez zoomer puis recentrer, ce qui rend difficile de trouver où vous étiez. Cela peut être frustrant si vous l'utilisez pendant de longues périodes.

Bonus que j'ai trouvé:

  • Le microscope est livré avec un livret d'instructions rédigé en sept ou huit langues pour s'adapter à de nombreux utilisateurs différents. Il est également écrit de manière très articulée. C'est important, car vous ne savez pas combien de livrets de produits j'ai vu qui n'étaient écrits qu'en langue étrangère ou étaient à peine compréhensibles.
  • J'adore le support fourni avec la lunette. Il est très stable et fonctionne bien pour une utilisation mains libres et la prise de photos.

Si vous voulez voir une démonstration de la façon dont cet appareil prend des photos, rendez-vous sur cette vidéo. Mygiguser fait un tutoriel étape par étape sur la façon d'obtenir une image d'une pièce. La procédure est effectuée sur un Mac et implique des fonctions telles que la configuration de la mise au point et l'utilisation des menus du logiciel.

Meilleur pour: Le microscope numérique Celestron 5 MP Pro est idéal pour les grandes salles de classe. Il permet aux enfants du premier rang jusqu'au dernier rang d'avoir une vision tout aussi bonne de l'image d'un spécimen.

4. YINAMA 4,3 pouces LCD →

L'écran LCD Yinama de 4,3 pouces est une excellente lunette de départ pour les enfants. Il est même livré avec des diapositives prédéfinies, afin qu'ils puissent commencer tout de suite. Sa batterie rechargeable dure longtemps, vous n'aurez donc pas à faire face à un télescope soudainement vide au milieu d'une leçon.

C'est également très bien si vous avez besoin d'une batterie longue durée lorsque vous emmenez votre classe dans les bois ou dans un parc. Bien qu'il n'y ait qu'une différence de 40 $ entre le Yinama et le Celestron à boîtier en aluminium, le Yinama lésine un peu sur la qualité avec du plastique bon marché.

  • Les images du microscope Yinama peuvent être projetées sur un tableau intelligent. Cela le rend idéal pour la projection pour des groupes d'enfants, afin que tout le monde puisse voir.
  • L'instrument peut être fixe ou portatif. Cela ouvre plus de possibilités pour savoir où, quand et comment il peut être utilisé. Il s'adapte à la salle de classe, à une sortie scolaire ou simplement à l'utiliser dans différentes parties de l'école.
  • Le Yinama est annoncé comme ayant un grossissement de 1000x. Cependant, il semble plus proche de 100x.
  • La portée n'est pas fournie avec des instructions, vous devez donc résoudre vous-même la configuration. Il n'y a pas non plus de numéros de service client ou d'adresse e-mail disponibles.

Bonus que j'ai trouvé:

  • J'ai aimé que le déclencheur soit sur la base. Lorsque vous appuyez dessus pour prendre une photo, l'objet reste net et ne bouge pas.
  • Ce microscope numérique a un excellent zoom ! Les détails du spécimen sont clairs et bien définis.

N'ajustez pas votre son - cette vidéo de Joseph B. Williams n'a pas de narration. Au lieu de cela, vous ferez une visite visuelle du Yinama, avec la caméra panoramique lentement sur les différents composants de l'appareil. La vidéo montre également les détails qui peuvent être obtenus dans un échantillon lorsque la portée est correctement focalisée.

Meilleur pour: La portabilité de cet instrument le rend idéal pour les sorties sur le terrain. Il exposera non seulement les enfants à une analyse scientifique du plein air, mais favorisera une appréciation de la nature. Si vous enseignez aux enfants des quartiers défavorisés, ils n'ont peut-être jamais pensé que la science pouvait être si intéressante et excitante.

5. TSAAGAN Wi-Fi USB →

La portée TSAAGAN WiFi USB est un appareil portable qui fonctionne avec les systèmes Android et iOS. Il est léger et peut facilement être transporté à n'importe quel endroit où il est nécessaire. Ce microscope numérique a également une longue durée de vie de la batterie, ce qui est utile si vous donnez des cours à l'extérieur.

C'est un outil tellement amusant que vos élèves ne savent peut-être pas qu'ils sont en train d'apprendre !

  • La lentille doit toucher l'échantillon pour faire la mise au point. Cependant, il offre une bonne mise au point et prend de bonnes photos.
  • La plupart des enfants savent utiliser les smartphones. Cela influencera fortement la facilité d'utilisation.
  • Il a une monture fragile qui se casse facilement. C'est un problème courant avec les systèmes bas de gamme.
  • Vous devez télécharger l'application Max-See lorsque vous vous connectez à un iPhone ou un iPad. C'est extrêmement buggé.

Bonus que j'ai trouvé :

  • Ce microscope numérique est doté d'un joli câble USB de quatre pieds de long. J'aime ça parce qu'il offre une liberté de mouvement.
  • La lunette fournit 30 images par seconde avec une luminosité de 600x. C'est assez décent pour un instrument bas de gamme.

J'ai trouvé cette vidéo utile pour un déballage étape par étape du TSAAGAN WiFi USB par Alex de Mcphoney Tech. C'est un narrateur assez coloré, et ses réactions aux échantillons agrandis sont inestimables : « J'ai réglé la lumière jusqu'à la couleur naturelle de la feuille. En fait, ça a l'air assez sinistre !

Meilleur pour: L'instrument TSAAGAN WiFi USB est idéal pour les enfants férus de technologie qui connaissent bien les smartphones et les technologies associées. Comme la plupart des enfants le sont, ce microscope leur conviendra naturellement.


Contenu

Les processus médiés par la tubuline et les microtubules, comme la locomotion cellulaire, ont été observés par les premiers microscopistes, comme Leeuwenhoek (1677). Cependant, la nature fibreuse des flagelles et d'autres structures a été découverte deux siècles plus tard, avec des microscopes optiques améliorés, et confirmée au 20e siècle avec le microscope électronique et des études biochimiques. [8]

Les dosages in vitro des microtubules pour les protéines motrices telles que la dynéine et la kinésine sont recherchés en marquant par fluorescence un microtubule et en fixant le microtubule ou les protéines motrices sur une lame de microscope, puis en visualisant la lame avec une microscopie vidéo améliorée pour enregistrer le déplacement des protéines motrices des microtubules. Cela permet le mouvement des protéines motrices le long du microtubule ou du microtubule se déplaçant à travers les protéines motrices. [9] Par conséquent, certains processus microtubulaires peuvent être déterminés par kymographe. [dix]

Chez les eucaryotes, les microtubules sont de longs cylindres creux constitués de dimères α- et -tubuline polymérisés. [12] L'espace intérieur des cylindres de microtubules creux est appelé lumière. Les sous-unités α et -tubuline sont identiques au niveau des acides aminés et ont chacune un poids moléculaire d'environ 50 kDa. [13]

Ces dimères /β-tubuline polymérisent bout à bout en protofilaments linéaires qui s'associent latéralement pour former un seul microtubule, qui peut ensuite être étendu par l'ajout de plus de dimères α/β-tubuline. Typiquement, les microtubules sont formés par l'association parallèle de treize protofilaments, bien que des microtubules composés de moins ou plus de protofilaments aient été observés chez diverses espèces [14] ainsi que in vitro. [15]

Les microtubules ont une polarité distincte qui est critique pour leur fonction biologique. La tubuline polymérise bout à bout, les sous-unités d'un dimère de tubuline entrant en contact avec les sous-unités du dimère suivant. Par conséquent, dans un protofilament, une extrémité aura les sous-unités exposées tandis que l'autre extrémité aura les sous-unités exposées. Ces extrémités sont désignées respectivement par les extrémités (-) et (+). Le faisceau de protofilaments parallèles les uns aux autres avec la même polarité, donc, dans un microtubule, il y a une extrémité, l'extrémité (+), avec seulement des sous-unités exposées, tandis que l'autre extrémité, l'extrémité (-) n'a que α -sous-unités exposées. Alors que l'allongement des microtubules peut se produire à la fois aux extrémités (+) et (-), il est significativement plus rapide à l'extrémité (+). [16]

L'association latérale des protofilaments génère une structure pseudo-hélicoïdale, avec un tour d'hélice contenant 13 dimères de tubuline, chacun provenant d'un protofilament différent. Dans l'architecture "13-3" la plus courante, le 13e dimère de tubuline interagit avec le dimère de tubuline suivant avec un décalage vertical de 3 monomères de tubuline en raison de l'hélicité du virage. Il existe d'autres architectures alternatives, telles que 11-3, 12-3, 14-3, 15-4 ou 16-4, qui ont été détectées à une fréquence beaucoup plus faible. [17] Les microtubules peuvent également se transformer en d'autres formes telles que des filaments hélicoïdaux, qui sont observés dans des organismes protistes comme les foraminifères. [18] Il existe deux types distincts d'interactions qui peuvent se produire entre les sous-unités de protofilaments latéraux au sein du microtubule, appelées réseaux de type A et de type B. Dans le réseau de type A, les associations latérales de protofilaments se produisent entre les sous-unités adjacentes et -tubuline (c'est-à-dire qu'une sous-unité -tubuline d'un protofilament interagit avec une sous-unité -tubuline d'un protofilament adjacent). Dans le réseau de type B, les sous-unités et -tubuline d'un protofilament interagissent avec les sous-unités et -tubuline d'un protofilament adjacent, respectivement. Des études expérimentales ont montré que le réseau de type B est l'arrangement principal au sein des microtubules. Cependant, dans la plupart des microtubules, il existe un joint dans lequel les sous-unités de tubuline interagissent α-β. [19]

Certaines espèces de Prothécobactérie contiennent également des microtubules. La structure de ces microtubules bactériens est similaire à celle des microtubules eucaryotes, constitués d'un tube creux de protofilaments assemblés à partir d'hétérodimères de tubuline bactérienne A (BtubA) et de tubuline bactérienne B (BtubB). BtubA et BtubB partagent les caractéristiques de la α- et de la -tubuline. Contrairement aux microtubules eucaryotes, les microtubules bactériens n'ont pas besoin de chaperons pour se replier. [20] Contrairement aux 13 protofilaments des microtubules eucaryotes, les microtubules bactériens n'en comportent que cinq. [21]

Les microtubules font partie du cytosquelette, un réseau structurel au sein du cytoplasme de la cellule. Les rôles du cytosquelette des microtubules comprennent le support mécanique, l'organisation du cytoplasme, le transport, la motilité et la ségrégation des chromosomes. Dans le développement des neurones, les microtubules sont appelés neurotubules [22] et ils peuvent moduler la dynamique de l'actine, un autre composant du cytosquelette. [23] A microtubule is capable of growing and shrinking in order to generate force, and there are motor proteins that allow organelles and other cellular components to be carried along a microtubule. This combination of roles makes microtubules important for organizing and moving intracellular constituents.

The organization of microtubules in the cell is cell-type specific. In epithelia, the minus-ends of the microtubule polymer are anchored near the site of cell-cell contact and organized along the apical-basal axis. After nucleation, the minus-ends are released and then re-anchored in the periphery by factors such as ninein and PLEKHA7. [24] In this manner, they can facilitate the transport of proteins, vesicles and organelles along the apical-basal axis of the cell. In fibroblasts and other mesenchymal cell-types, microtubules are anchored at the centrosome and radiate with their plus-ends outwards towards the cell periphery (as shown in the first figure). In these cells, the microtubules play important roles in cell migration. Moreover, the polarity of microtubules is acted upon by motor proteins, which organize many components of the cell, including the endoplasmic reticulum and the Golgi apparatus.

Nucleation Edit

Nucleation is the event that initiates the formation of microtubules from the tubulin dimer. Microtubules are typically nucleated and organized by organelles called microtubule-organizing centres (MTOCs). Contained within the MTOC is another type of tubulin, γ-tubulin, which is distinct from the α- and β-subunits of the microtubules themselves. The γ-tubulin combines with several other associated proteins to form a lock washer-like structure known as the "γ-tubulin ring complex" (γ-TuRC). This complex acts as a template for α/β-tubulin dimers to begin polymerization it acts as a cap of the (−) end while microtubule growth continues away from the MTOC in the (+) direction. [25]

The centrosome is the primary MTOC of most cell types. However, microtubules can be nucleated from other sites as well. For example, cilia and flagella have MTOCs at their base termed basal bodies. In addition, work from the Kaverina group at Vanderbilt, as well as others, suggests that the Golgi apparatus can serve as an important platform for the nucleation of microtubules. [26] Because nucleation from the centrosome is inherently symmetrical, Golgi-associated microtubule nucleation may allow the cell to establish asymmetry in the microtubule network. In recent studies, the Vale group at UCSF identified the protein complex augmin as a critical factor for centrosome-dependent, spindle-based microtubule generation. It that has been shown to interact with γ-TuRC and increase microtubule density around the mitotic spindle origin. [27]

Some cell types, such as plant cells, do not contain well defined MTOCs. In these cells, microtubules are nucleated from discrete sites in the cytoplasm. Other cell types, such as trypanosomatid parasites, have a MTOC but it is permanently found at the base of a flagellum. Here, nucleation of microtubules for structural roles and for generation of the mitotic spindle is not from a canonical centriole-like MTOC.

Polymerization Edit

Following the initial nucleation event, tubulin monomers must be added to the growing polymer. The process of adding or removing monomers depends on the concentration of αβ-tubulin dimers in solution in relation to the critical concentration, which is the steady state concentration of dimers at which there is no longer any net assembly or disassembly at the end of the microtubule. If the dimer concentration is greater than the critical concentration, the microtubule will polymerize and grow. If the concentration is less than the critical concentration, the length of the microtubule will decrease. [28]

Dynamic instability Edit

Dynamic instability refers to the coexistence of assembly and disassembly at the ends of a microtubule. The microtubule can dynamically switch between growing and shrinking phases in this region. [29] Tubulin dimers can bind two molecules of GTP, one of which can be hydrolyzed subsequent to assembly. During polymerization, the tubulin dimers are in the GTP-bound state. [12] The GTP bound to α-tubulin is stable and it plays a structural function in this bound state. However, the GTP bound to β-tubulin may be hydrolyzed to GDP shortly after assembly. The assembly properties of GDP-tubulin are different from those of GTP-tubulin, as GDP-tubulin is more prone to depolymerization. [30] A GDP-bound tubulin subunit at the tip of a microtubule will tend to fall off, although a GDP-bound tubulin in the middle of a microtubule cannot spontaneously pop out of the polymer. Since tubulin adds onto the end of the microtubule in the GTP-bound state, a cap of GTP-bound tubulin is proposed to exist at the tip of the microtubule, protecting it from disassembly. When hydrolysis catches up to the tip of the microtubule, it begins a rapid depolymerization and shrinkage. This switch from growth to shrinking is called a catastrophe. GTP-bound tubulin can begin adding to the tip of the microtubule again, providing a new cap and protecting the microtubule from shrinking. This is referred to as "rescue". [31]

"Search and capture" model Edit

In 1986, Marc Kirschner and Tim Mitchison proposed that microtubules use their dynamic properties of growth and shrinkage at their plus ends to probe the three dimensional space of the cell. Plus ends that encounter kinetochores or sites of polarity become captured and no longer display growth or shrinkage. In contrast to normal dynamic microtubules, which have a half-life of 5–10 minutes, the captured microtubules can last for hours. This idea is commonly known as the "search and capture" model. [32] Indeed, work since then has largely validated this idea. At the kinetochore, a variety of complexes have been shown to capture microtubule (+)-ends. [33] Moreover, a (+)-end capping activity for interphase microtubules has also been described. [34] This later activity is mediated by formins, [35] the adenomatous polyposis coli protein, and EB1, [36] a protein that tracks along the growing plus ends of microtubules.

Post-translational modifications Edit

Although most microtubules have a half-life of 5–10 minutes, certain microtubules can remain stable for hours. [34] These stabilized microtubules accumulate post-translational modifications on their tubulin subunits by the action of microtubule-bound enzymes. [37] [38] However, once the microtubule depolymerizes, most of these modifications are rapidly reversed by soluble enzymes. Since most modification reactions are slow while their reverse reactions are rapid, modified tubulin is only detected on long-lived stable microtubules. Most of these modifications occur on the C-terminal region of alpha-tubulin. This region, which is rich in negatively charged glutamate, forms relatively unstructured tails that project out from the microtubule and form contacts with motors. Thus, it is believed that tubulin modifications regulate the interaction of motors with the microtubule. Since these stable modified microtubules are typically oriented towards the site of cell polarity in interphase cells, this subset of modified microtubules provide a specialized route that helps deliver vesicles to these polarized zones. These modifications include:

    : the removal of the C-terminal tyrosine from alpha-tubulin. This reaction exposes a glutamate at the new C-terminus. As a result, microtubules that accumulate this modification are often referred to as Glu-microtubules. Although the tubulin carboxypeptidase has yet to be identified, the tubulin—tyrosine ligase (TTL) is known. [39]
  • Delta2: the removal of the last two residues from the C-terminus of alpha-tubulin. [40] Unlike detyrosination, this reaction is thought to be irreversible and has only been documented in neurons. : the addition of an acetyl group to lysine 40 of alpha-tubulin. This modification occurs on a lysine that is accessible only from the inside of the microtubule, and it remains unclear how enzymes access the lysine residue. The nature of the tubulin acetyltransferase remains controversial, but it has been found that in mammals the major acetyltransferase is ATAT1. [41] however, the reverse reaction is known to be catalyzed by HDAC6. [42] : the addition of a glutamate polymer (typically 4-6 residues long [43] ) to the gamma-carboxyl group of any one of five glutamates found near the end of alpha-tubulin. Enzymes related to TTL add the initial branching glutamate (TTL4,5 and 7), while other enzymes that belong to the same family lengthen the polyglutamate chain (TTL6,11 and 13). [38] : the addition of a glycine polymer (2-10 residues long) to the gamma-carboxyl group of any one of five glutamates found near the end of beta-tubulin. TTL3 and 8 add the initial branching glycine, while TTL10 lengthens the polyglycine chain. [38]

Tubulin-binding drugs and chemical effects Edit

A wide variety of drugs are able to bind to tubulin and modify its assembly properties. These drugs can have an effect at intracellular concentrations much lower than that of tubulin. This interference with microtubule dynamics can have the effect of stopping a cell's cell cycle and can lead to programmed cell death or apoptosis. However, there are data to suggest that interference of microtubule dynamics is insufficient to block the cells undergoing mitosis. [44] These studies have demonstrated that suppression of dynamics occurs at concentrations lower than those needed to block mitosis. Suppression of microtubule dynamics by tubulin mutations or by drug treatment have been shown to inhibit cell migration. [45] Both microtubule stabilizers and destabilizers can suppress microtubule dynamics.

The drugs that can alter microtubule dynamics include:

  • The cancer-fighting taxane class of drugs (paclitaxel (taxol) and docetaxel) block dynamic instability by stabilizing GDP-bound tubulin in the microtubule. Thus, even when hydrolysis of GTP reaches the tip of the microtubule, there is no depolymerization and the microtubule does not shrink back.

Taxanes (alone or in combination with platinum derivatives (carboplatine) or gemcitabine) are used against breast and gynecological malignancies, squamous-cell carcinomas (head-and-neck cancers, some lung cancers), etc.

  • The epothilones, e.g. Ixabepilone, work in a similar way to the taxanes.
  • Vinorelbine, Nocodazole, vincristine, and colchicine have the opposite effect, blocking the polymerization of tubulin into microtubules. binds to the (+) growing end of the microtubules. Eribulin exerts its anticancer effects by triggering apoptosis of cancer cells following prolonged and irreversible mitotic blockade.

Expression of β3-tubulin has been reported to alter cellular responses to drug-induced suppression of microtubule dynamics. In general the dynamics are normally suppressed by low, subtoxic concentrations of microtubule drugs that also inhibit cell migration. However, incorporating β3-tubulin into microtubules increases the concentration of drug that is needed to suppress dynamics and inhibit cell migration. Thus, tumors that express β3-tubulin are not only resistant to the cytotoxic effects of microtubule targeted drugs, but also to their ability to suppress tumor metastasis. Moreover, expression of β3-tubulin also counteracts the ability of these drugs to inhibit angiogenesis which is normally another important facet of their action. [ citation requise ]

Microtubule polymers are extremely sensitive to various environmental effects. Very low levels of free calcium can destabilize microtubules and this prevented early researchers from studying the polymer in vitro. [12] Cold temperatures also cause rapid depolymerization of microtubules. In contrast, heavy water promotes microtubule polymer stability. [46]

Microtubule-associated proteins (MAPs) Edit

MAPs have been shown to play a crucial role in the regulation of microtubule dynamics in vivo. The rates of microtubule polymerization, depolymerization, and catastrophe vary depending on which microtubule-associated proteins (MAPs) are present. The originally identified MAPs from brain tissue can be classified into two groups based on their molecular weight. This first class comprises MAPs with a molecular weight below 55-62 kDa, and are called τ (tau) proteins. In vitro, tau proteins have been shown to directly bind microtubules, promote nucleation and prevent disassembly, and to induce the formation of parallel arrays. [47] Additionally, tau proteins have also been shown to stabilize microtubules in axons and have been implicated in Alzheimer's disease. [48] The second class is composed of MAPs with a molecular weight of 200-1000 kDa, of which there are four known types: MAP-1, MAP-2, MAP-3 and MAP-4. MAP-1 proteins consists of a set of three different proteins: A, B and C. The C protein plays an important role in the retrograde transport of vesicles and is also known as cytoplasmic dynein. MAP-2 proteins are located in the dendrites and in the body of neurons, where they bind with other cytoskeletal filaments. The MAP-4 proteins are found in the majority of cells and stabilize microtubules. In addition to MAPs that have a stabilizing effect on microtubule structure, other MAPs can have a destabilizing effect either by cleaving or by inducing depolymerization of microtubules. Three proteins called katanin, spastin, and fidgetin have been observed to regulate the number and length of microtubules via their destabilizing activities. Furthermore, KIAA1211L is predicted to be localized to the microtubules. [49]

Plus-end tracking proteins (+TIPs) Edit

Plus end tracking proteins are MAP proteins which bind to the tips of growing microtubules and play an important role in regulating microtubule dynamics. For example, +TIPs have been observed to participate in the interactions of microtubules with chromosomes during mitosis. The first MAP to be identified as a +TIP was CLIP170 (cytoplasmic linker protein), which has been shown to play a role in microtubule depolymerization rescue events. Additional examples of +TIPs include EB1, EB2, EB3, p150Glued, Dynamitin, Lis1, CLIP115, CLASP1, and CLASP2. [ citation requise ]


What is a Light Microscope? (Avec des photos)

A light microscope, also called an optical microscope, is an instrument to observe small objects using visible light and lenses. It is a highly used and well-recognized microscope in the scientific community. The device can be used to view living or dead samples and can maximize these samples up to one thousand times (1,000x) their actual size. Light microscopes include almost all compound and stereo microscopes.

This type of microscope is composed of an objective lens, an ocular lens, a stage, a light source, a condenser, a tube, an arm to support the tube, and a focusing system. The specimen is set on the stage, a platform usually equipped with metal arms to hold the specimen or slide in place. The light bulb is situated beneath the stage so that the light shines up through the specimen. The tube focuses down on the stage so that the ocular lens, or eyepiece, is at the far end of the tube and the objective lens is at the end closer to the specimen.

The objective lens is a small, round piece of glass that collects the light from a small area of the specimen at a short focal length and directs the light into the tube. The image is then magnified by the ocular lens, which is put up to the eye. Because the objective lens is convex, it focuses and directs light into its center. By contrast, the concave shape of the ocular lens serves to spread out the light as it meets the eye, thereby making the image bigger. The condenser is a lens, often implanted into the stage or located just below it, that condenses the light rays from the light source onto the spot that is being examined on the specimen above.

A simple light microscope uses only one magnifying lens, but today, most microscopes use two or more lenses to magnify the image. Most microscopes today are compound microscopes that use more than one magnifying lens. The eyepiece typically magnifies to 2x, 4x, or 10x actual size and the ocular lens may magnify 4x, 5x, 10x, 20x, 40x, 50x and 100x. A microscope usually comes with three ocular lenses of different magnification levels set on a rotating nosepiece. There may also be a fourth lens used for oil immersion viewing of specimens, wherein a drop of oil is set on the slide to further refract light and the oil immersion lens is lowered until it touches the oil droplet.

The relationship of glass to magnification and the concept of lenses were discovered by the Romans in the first century, A.D. Lenses were eventually put to use at the end of the 1200s as spectacles. This may have set the stage for Zaccharias and Hans Jannsen, Dutch spectacle makers who, in the year 1590, are said to have invented the first compound microscope by experimenting with several lenses in a tube. The validity of the Jannsens’ claim to this invention, however, is highly disputed. Many historians credit Tuscan scientist Galileo Galilei with the development of the compound microscope and technologically similar telescopes in the early 1600s.

Later, a Dutch store apprentice named Anton Von Leeuwenhoek refined lens making to achieve a steep curvature on a small lens, allowing him to focus on much smaller specimens than ever before. He is often referred to as a father of microscopy as he introduced the microscope as a vital instrument to the field of biology. In addition to other discoveries, Anton Von Leeuwenhoek was the first to view bacteria, yeast, and the organisms in a drop of water.


Varieties of Light Microscopes

Most compound microscopes today have an illuminator built into the base. A condenser located below the stage has lenses that focus the light on the specimen and a diaphragm that regulates contrast. After passing through the specimen on the stage, the light enters an objective lens. Most light microscopes have three or four objective lenses on a rotating turret. These lenses magnify the image by 4x to 100x. The light then passes up the body tube to an ocular lens that magnifies the image another 10x to 15x. Research-grade microscopes and the better student microscopes have a pair of ocular lenses so that one can view the specimen with both eyes at once.

There are many varieties of compound light microscopes for special purposes. For viewing tissue cultures covered with liquid media, biologists can use an inverted light microscope in which the culture is illuminated from above and the objective lenses are positioned below the specimen. The phase contrast microscope can be used to enhance contrast in living specimens, thus avoiding the use of lethal fixatives and stains. The polarizing light microscope is used for analyzing crystals and minéraux , among other things. The fluorescence microscope is used to examine structures that bind special fluorescent dyes. It can be used, for example, to identify where a dyetagged hormone binds to its target cell.

Compound light microscopes achieve useful magnifications up to 1200x and resolutions down to about 0.25 micrometers. That is, two objects in a cell can be as close as 0.25 micrometers and still detected as separate entities. Such resolution is good enough to see most bacteria and some mitochondries and microvilli.

These microscopes generally require thin, transparent, relatively small specimens. They also require that the user adjust to the phenomenon of optical inversion if a specimen is moved to the left, it appears under the microscope to move right when moved up, it appears to move down and vice versa. The stereomicroscope works at much lower magnification and resolution, but has several advantages: (1) it has two lens systems that view the specimen from slightly different angles, thus giving the specimen a stereoscopic (three-dimensional) appearance (2) it can use either transmitted or reflected light and with reflected light, it can be used to view opaque specimens such as rocks, fossils, insects, electronic circuit boards, and so forth (3) it has a much greater working distance between the specimen and objective lens, allowing for the examination of relatively large objects and for easier manipulation of objects under the microscope (4) the working distance enables relatively easy dissection of specimens such as insects, allowing hands and instruments to reach the working space while one looks through the microscope and (5) it does not produce optical inversion that is, movements to the right appear to go to the right, making dissection and other manipulations much easier.

The utility of light microscopy is governed by its use of visible light, which limits resolution. The shorter the wavelength of the illumination, the better the resolution. Electron beams have shorter wavelengths than photons. The invention of the electron microscope in the late 1930s and its refinement over the next half century permitted vastly improved visualization of cell and tissue fine structure.

Kenneth S. Saladin and Sara E. Miller


Yes, You Can See Tardigrades with a Cheap Optical Microscope

Here at Live Science, our top choice for "cute animal" is the roly-poly and nearly indestructible tardigrade. Yep, we're talking about the water bear, the microscopic organism that looks more like an alien caterpillar than an Earthly animal when viewed up close.

Plenty of gorgeous shots of the tiny creatures online show their segmented, pudgy bodies their eight legs tipped with claws and their circular mouths in all their glory. But those images are generally shot through high-powered and advanced microscopes, and sometimes, they're even touched up afterward. That got us wondering whether an inexpensive, off-the-shelf microscope you may have used as a kid in biology class would do the trick.

What if we went out and grabbed some tardigrades and popped the little, squirming bodies under a microscope lens? Well, that's just what we did. At first, we planned to go out to a backyard and collect them from the grass and dirt apparently, they thrive in just about any environmental conditions. But to ensure they had all their legs and other body parts, we went with "store-bought" specimens. [Here's a look at what we learned about each microscope's pros and cons while using them to look at tardigrades.]

If you're interested in doing the same, you can buy live tardigrades from Carolina Biological Supply Co.

Overall, we found that the digital microscopes are completely unsuitable for looking at things as small as tardigrades, which grow to be no longer than a millimeter, or about the thickness of a credit card. The nondigital optical microscopes, however, produced some amazing tardigrade images.

Let's have a look under the lens:


Voir la vidéo: Les étoiles (Juillet 2022).


Commentaires:

  1. Larry

    Je veux dire que vous vous trompez. Je peux défendre ma position. Ecrivez moi en MP, on discutera.

  2. Nikogar

    Merci. Je l'ai lu avec intérêt. J'ai ajouté mon blog aux favoris =)

  3. Amazu

    No, I won't be able to tell you.

  4. Momuso

    Vous avez tort. Discutons-en. Envoyez-moi un e-mail en MP, nous parlerons.



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