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Quel est cet insecte jaunâtre ?

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J'ai trouvé cet insecte à l'intérieur de ma chaussure. Il mesure environ 1 cm de long et moins d'un demi-centimètre de large. Il a été trouvé aux Pays-Bas, dans la province de Gelderland.

Gros plan

Tir éloigné

À l'envers

Quel genre d'insecte est-ce ?

Éditer:

Comme @fileunderwater l'a suggéré : la question est "fermée" mais pas identique. Je pense que le duplicata proposé ne fournira qu'une identification de la famille de l'insecte, mais rien de plus précis et spécifique. Par conséquent, les réponses aux 2 questions varient.


C'est la larve de Harmonia axyridis (Coccinelle asiatique).

L'image publiée par timbernasley est plus précise car la larve que vous avez montrée est à son dernier stade larvaire, un stade qui n'est pas aussi précoce que celui-ci.

Voici le lien : Wikipédia


Ceci est une larve de coccinelle : recherche d'images google


En 1758, Carl Linnaeus décrit l'espèce dans la dixième édition de son Systema Naturae, donnant le nom Scolopendra coleoptrata, écrivant qu'il a un « thorax coléoptère » (semblable à un coléoptère). [3] En 1801, Jean-Baptiste Lamarck se sépare scutigera de scolopendre, appelant cette espèce Scutigera coleoptrata. [4] Le mot scutigera vient de "porter" (gerere) et "bouclier" (scutum), en raison de la forme des plaques à l'arrière du chilopode. [5]

Le corps d'un adulte Scutigera coleoptrata est généralement de 25 à 35 mm (0,98 à 1,38 in) de longueur, bien que des spécimens plus gros soient parfois rencontrés. [6] Jusqu'à 15 paires de longues pattes sont attachées au corps rigide. Avec les antennes, ils donnent au mille-pattes une apparence de 75 à 100 mm (3 à 4 pouces) de longueur. [6] Les jambes délicates lui permettent d'atteindre des vitesses surprenantes allant jusqu'à 0,4 mètre par seconde (1,3 pied/s) [7] en traversant les sols, les murs et le long des plafonds. Son corps est gris jaunâtre et a trois bandes dorsales sombres sur toute sa longueur, les pattes ont également des bandes sombres. S. coleoptrata a développé un automimétisme en ce sens que ses pattes postérieures en forme de queue présentent l'apparence d'antennes. Lorsque le mille-pattes est au repos, il n'est pas facile de distinguer son extrémité crânienne de son extrémité caudale.

Contrairement à la plupart des autres mille-pattes, les mille-pattes domestiques et leurs proches ont des yeux à facettes bien développés.

Les mille-pattes domestiques pondent leurs œufs au printemps. Dans une observation en laboratoire de 24 mille-pattes domestiques, une moyenne de 63 et un maximum de 151 œufs ont été pondus. Comme pour de nombreux autres arthropodes, les larves ressemblent à des versions miniatures de l'adulte, mais avec moins de pattes. Les jeunes mille-pattes ont quatre paires de pattes lorsqu'ils sont éclos. Ils gagnent une nouvelle paire avec la première mue et deux paires avec chacune de leurs cinq mues suivantes. Les adultes avec 15 paires de pattes conservent ce nombre pendant trois étapes de mue supplémentaires (séquence 4-5-7-9-11-13-15-15-15-15 paires). [8]

Les mille-pattes domestiques vivent de trois à sept ans, selon l'environnement. Ils peuvent commencer à se reproduire dès leur troisième année. Pour commencer l'accouplement, le mâle et la femelle tournent l'un autour de l'autre. Ils initient le contact avec leurs antennes. Le mâle dépose son sperme sur le sol et la femelle l'utilise ensuite pour féconder ses ovules.

Les mille-pattes domestiques se nourrissent d'araignées, de punaises de lit, de termites, de cafards, de lépismes argentés, de fourmis et d'autres arthropodes domestiques. Ils administrent du venin par forcipules. Celles-ci ne font pas partie de leurs mandibules, donc à proprement parler elles piquent plutôt que mordent. Ce sont surtout des chasseurs nocturnes. Malgré leurs yeux développés, ils semblent se fier principalement à leurs antennes pour chasser. Leurs antennes sont sensibles à la fois aux odeurs et aux informations tactiles. Ils utilisent à la fois leurs mandibules et leurs pattes pour tenir leurs proies. De cette façon, ils peuvent lutter contre plusieurs petits insectes en même temps. Pour capturer une proie, ils sautent dessus ou utilisent leurs jambes dans une technique décrite comme "lasso". L'utilisation de leurs pattes pour battre des proies a également été décrite. [9] Comme les autres mille-pattes, ils peuvent striduler.

Dans une étude sur l'alimentation, S. coleoptrata a montré la capacité de faire la distinction entre les proies possibles, en évitant les insectes dangereux. Ils ont également adapté leur mode d'alimentation au type de danger que la proie pourrait leur poser. Pour les guêpes, elles se retirent après avoir appliqué le venin pour lui laisser le temps de faire effet. [9] Lorsque le mille-pattes est en danger de devenir lui-même une proie, il peut détacher les pattes qui sont devenues piégées. Les mille-pattes domestiques ont été observés pour toiletter leurs jambes en se recroquevillant et en les toilettant avec leurs forcipules.

En 1902, C. L. Marlatt, un entomologiste au Département de l'agriculture des États-Unis, a écrit une brève description du mille-pattes domestique : [1]

On peut souvent le voir filer à travers les étages à très grande vitesse, s'arrêtant parfois soudainement et restant absolument immobile, pour reprendre ses mouvements rapides, s'élançant souvent directement sur les occupants de la maison, en particulier les femmes, manifestement avec le désir de se cacher sous leurs robes. , et créant ainsi beaucoup de consternation.

À l'extérieur, les mille-pattes domestiques préfèrent vivre dans des endroits frais et humides. Les systèmes respiratoires des mille-pattes ne fournissent aucun mécanisme pour fermer les stigmates, et c'est pourquoi ils ont besoin d'un environnement qui les protège de la déshydratation et du froid excessif. La plupart vivent à l'extérieur, principalement sous de gros rochers, des tas de bois ou de feuilles, dans la poussière d'écorce et surtout dans les tas de compost. Ils sortent souvent de leur cachette lors de l'arrosage des jardins ou des plates-bandes. Ces mille-pattes peuvent être trouvés dans presque n'importe quelle partie de la maison bien qu'ils soient généralement rencontrés dans des zones sombres ou faiblement éclairées telles que les sous-sols et les garages. À l'intérieur de la maison, ils peuvent être trouvés dans les salles de bain et les toilettes, qui ont tendance à être humides, mais ils peuvent également être trouvés dans des endroits plus secs comme les bureaux, les chambres et les salles à manger. On les voit généralement ramper le long du sol ou du sol, mais ils sont capables de grimper aux murs. La plus grande probabilité de les rencontrer est au printemps, lorsqu'ils émergent en raison d'un temps plus chaud et en automne/automne, lorsque le temps froid les oblige à se réfugier dans les habitats humains.

S. coleoptrata est originaire de la région méditerranéenne, mais il s'est répandu dans une grande partie de l'Europe, de l'Asie, de l'Amérique du Nord et de l'Amérique du Sud. On pense qu'il a d'abord été introduit dans les Amériques au Mexique et au Guatemala et qu'il atteint maintenant le nord jusqu'au Canada et le sud jusqu'en Argentine. [9]

Aux États-Unis, il s'est propagé vers le nord à partir des États du sud, atteignant la Pennsylvanie en 1849, New York en 1885 et le Massachusetts et le Connecticut vers 1890. En 2009, sa répartition s'étendait de la Virginie à l'est à la côte de la Californie à l'ouest. . On le trouve également dans le nord-ouest du Pacifique, où il semble être un peu moins commun que dans d'autres régions du pays. [ citation requise ]

En 2011, il a été signalé pour la première fois au Chili, dans les régions métropolitaine et de Los Lagos. [dix]

En 2013, ils ont été enregistrés à Lichinga, au Mozambique, et en 2017 à Pemba et à Lujeri Tea Estate, Mulanje, dans le sud du Malawi. [ citation requise ]

Ils ont été trouvés dans l'est et le sud de l'Australie, de Perth à Adélaïde, en Australie du Sud, à Sydney, en Nouvelle-Galles du Sud et en Tasmanie. D'autres pays où ils ont été trouvés incluent la Nouvelle-Zélande, [11] le Japon [ citation requise ] et la Corée du Sud [ citation requise ] .

Bien que connu pour exister en Asie du Sud et du Sud-Est, S. Coleoptrata est relativement rare. [ citation requise ]

Les yeux à facettes de S. coleoptrata sont sensibles à la lumière du jour et très sensibles aux ultraviolets. [12] Ils se sont avérés capables de distinguer visuellement différentes mutations de Drosophila melanogaster. [13] Comment cette capacité s'accorde avec son mode de vie nocturne et son habitat naturel souterrain est encore à l'étude. Ils ne changent pas instantanément de direction lorsque la lumière est soudainement braquée sur eux, mais se retirent dans une cachette plus sombre.

Certaines des plaques recouvrant les segments du corps ont fusionné et sont devenues plus petites au cours de l'évolution vers l'état actuel de S. coleoptrata. Le décalage qui en résulte entre les segments du corps et les plaques dorsales (tergites) est la cause du corps rigide de ce mille-pattes.

Relation entre les segments du corps, les plaques dorsales (tergites) et les paires de pattes
Tergite 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11
Segments 1 2 3, 4 5, 6 7, 8, 9 10, 11 12, 13 14, 15 16 17 18
(telson)
Paires de jambes Forcipules 1 2, 3 4, 5 6, 7, 8 9, 10 11, 12 13, 14 15 (jambes de caisse claire en forme d'antenne) (gonopode) (anus)

Les tergites 10 et 11 ne sont pas complètement développés et le segment 18 n'a pas de sternite. Ce modèle s'écarte des descriptions de Lewis qui n'identifiait que 7 tergites et 15 segments. [14]

Une autre caractéristique qui définit S. coleoptrata en dehors des autres mille-pattes, c'est que leur hémolymphe s'est avérée contenir des protéines pour le transport de l'oxygène.

Le génome mitochondrial de S. coleoptrata a été séquencé. Cela a ouvert des discussions sur la taxonomie et la phylogénie de cette espèce et des espèces apparentées. [15]

Contrairement à ses cousins ​​tropicaux aux pattes plus courtes mais beaucoup plus gros, S. coleoptrata peut vivre toute sa vie à l'intérieur d'un bâtiment, généralement au rez-de-chaussée des maisons. Bien qu'ils surprennent souvent leurs colocataires involontaires avec leur apparence et leur vitesse surprenante, [16] ils ne sont généralement pas considérés comme dangereux pour les humains. Les mille-pattes domestiques fuient généralement lorsqu'ils sont dérangés et les morsures sont rares à moins d'être provoquées. Ses mâchoires ont du mal à pénétrer la peau humaine, et sa morsure et son venin produisent rarement une douleur localisée plus que temporaire, pas pire qu'une piqûre d'abeille. [6] [17]


Je viens de trouver cet insecte et je ne sais pas ce que c'est. Il semble que ce soit la larve d'une mouche ou peut-être un petit papillon. Je vis en Espagne donc c'est l'automne. Que dois-je faire avec ?

Cela ressemble un peu à une punaise (un isopode, pas un insecte) pour moi, mais je ne peux pas vraiment le dire à partir de la photo.

Besoin de plus d'informations:
Où l'as tu trouvé?
Taille?
Est-ce aquatique ou terrestre (je ne peux pas le dire sur la photo) ?
A-t-il des jambes ? Combien de? Les insectes ont 6 pattes à maturité.
Est-il plat ou rond en section transversale ?

Cela ressemble un peu à une punaise (un isopode, pas un insecte) pour moi, mais je ne peux pas vraiment le dire à partir de la photo.

Besoin de plus d'informations:
Où l'as tu trouvé?
Taille?
Est-ce aquatique ou terrestre (je ne peux pas le dire sur la photo) ?
A-t-il des jambes ? Combien de? Les insectes ont 6 pattes à maturité.
Est-il plat ou rond en section transversale ?

Je l'ai trouvé dans le mur de ma chambre (j'habite dans un appart près d'une rivière)
Il mesure environ 4-5 mm de long et 1'5 mm de large.
On dirait que c'est terrestre.
Il a 6 pattes dans la moitié supérieure et il est blanc jaunâtre en dessous.
La forme est comme un cylindre aplati.

Je ne veux pas le laisser dans la rue comment je l'ai nourri ?


Quel est cet insecte jaunâtre ? - La biologie

Les gilets jaunes sont un type de guêpe. Beaucoup de gens confondent ces petites guêpes avec des abeilles car elles sont de taille et de coloration similaires aux abeilles mellifères, mais elles appartiennent en fait à la famille des guêpes.

A quoi ressemble une veste jaune ?

Les gilets jaunes sont jaunes et noirs avec des rayures ou des bandes sur leur abdomen. Les travailleurs mesurent généralement environ ½ pouce de long. Comme tous les insectes, les gilets jaunes ont six pattes et trois parties principales du corps : la tête, le thorax et l'abdomen. Ils ont aussi quatre ailes et deux antennes.

Les gilets jaunes peuvent-ils piquer ?

Les gilets jaunes ont un dard au bout de leur abdomen. Contrairement aux abeilles mellifères, le dard d'une veste jaune ne sort généralement pas lorsqu'il pique, ce qui lui permet de piquer plusieurs fois. De ce fait, déranger un nid de guêpes jaunes peut être très dangereux ! Certaines personnes sont allergiques au venin d'une piqûre de gilet jaune et devraient immédiatement consulter un médecin.

Où vivent les Gilets Jaunes ?

Différentes espèces de gilets jaunes se trouvent dans le monde entier. En Amérique du Nord, la veste jaune européenne (guêpe allemande), la veste jaune de l'Est et la veste jaune du sud sont très courantes. Les gilets jaunes vivent dans des ruches ou des nids de grandes colonies. Selon les espèces, les nids seront soit souterrains, soit dans des zones quelque peu protégées comme un arbre évidé ou un grenier dans un bâtiment. Ils construisent leurs nids dans des couches de cellules à six côtés avec du bois qu'ils ont mâché en une pulpe. Une fois sèche, cette pâte devient une substance semblable à du papier.

Une colonie de gilets jaunes est composée d'ouvrières et de la reine. La reine reste au nid et pond des œufs. Le travail du travailleur consiste à protéger la reine, à construire le nid et à récupérer la nourriture pour la reine et les larves. Les nids grandissent avec le temps pour atteindre environ la taille d'un ballon de football et peuvent abriter de 4 000 à 5 000 gilets jaunes. Les nids sont généralement habités pendant une saison, car la colonie meurt en hiver.

Que mangent les gilets jaunes ?

Les guêpes jaunes se nourrissent principalement de nectar de fruits et de plantes. Ils ont une trompe (un peu comme une paille) qu'ils peuvent utiliser pour aspirer le jus de fruits et d'autres plantes. Ils sont également attirés par la nourriture humaine, comme les boissons sucrées, les bonbons et les jus. Parfois, ils mangent d'autres insectes ou essaient de voler le miel des abeilles.


Comment vivre avec des guêpes solitaires

La gestion des guêpes solitaires est difficile et inutile. N'oubliez pas que ces guêpes sont bénéfiques avec peu de risques de piqûres.

Si vous trouvez des guêpes solitaires dans votre paysage :

  • Ignorez-les et tolérez-les autant que possible.
  • Les guêpes solitaires ne sont actives que quelques semaines.
  • Ils ne vivent qu'une saison et ne réutilisent pas les nids année après année.
  • Les guêpes solitaires ne sont pas agressives et sont peu susceptibles de piquer.

Les guêpes solitaires peuvent parfois encore être préoccupantes lorsqu'elles nichent là où des personnes, en particulier des enfants, sont présentes. Dans les cas où il est difficile pour les résidents d'ignorer les nids, il y a peu d'options qui peuvent être tentées.

Options de gestion dans le gazon

Dans les zones de pelouse, la meilleure gestion consiste à traiter chaque nid individuellement avec de la poussière insecticide étiquetée pour les insectes nichant au sol, par ex. perméthrine. Pulvériser la zone du nid avec un insecticide liquide n'est pas très efficace.

Options de gestion dans les aires de jeux ou les bacs à sable

Les guêpes des sables ou autres guêpes creuseurs qui nichent dans des bacs à sable ou des terrains de jeux sont difficiles à gérer une fois qu'elles ont commencé à nicher. L'utilisation d'un pesticide là où les enfants jouent n'est pas recommandée.

Il pourrait être possible de décourager les guêpes de nicher dans une zone.

  • Le ratissage fréquent de la zone de nidification peut les amener à nicher ailleurs.
  • Poser une bâche sur les nids pendant plusieurs jours peut également les décourager de cette zone.

Nids de barbouilleur de boue

Lorsque des nids de barbouilleur de boue sont trouvés sur une maison, ignorez-les ou retirez les nids avec un couteau à mastic. Ils ne défendent pas leurs nids, il y a donc peu ou pas de risque de piqûres.


Écaille de pêche blanche

Écaille de pêche blanche, Aculus ligustri (Keifer) Eriophyidae, PROSTIGMATA

LA DESCRIPTION

Adulte &ndash L'écaille femelle mesure de 1 à 2,25 mm de diamètre, circulaire, convexe et épaissie. Il est blanc, blanc jaunâtre ou blanc grisâtre avec une tache jaune ou rougeâtre (la peau moulée de la nymphe). L'écaille mâle adulte est un petit insecte à deux ailes qui ressemble à un moucheron mais qui a deux filaments caudaux.

Œuf &ndash L'œuf femelle est de couleur corail et l'œuf mâle est blanc rosé. Les petits œufs se trouvent sous l'écaille de la femelle.

Nymphe &ndash L'écaille nymphal femelle ressemble à l'adulte mais est plus petite et n'a pas de tache sur l'écaille. La nymphe mâle est ovale allongée, blanche ou blanc sale, et mesure environ 1 mm de long. La surpopulation et des plantes hôtes particulières peuvent affecter considérablement la forme et la couleur de l'écaille.

Distribution &ndash L'échelle du pêcher blanc se trouve dans toute la partie sud des États-Unis et aussi loin au nord que le Connecticut.

Plantes hôtes &ndash Comme son nom l'indique, la cochenille blanche est un ravageur du pêcher. Cependant, cet insecte se nourrit de nombreuses autres plantes à valeur économique et ornementale. Certaines des plantes ornementales les plus fréquemment infestées sont le chinaberry, le pêcher à fleurs, le mûrier français et le kaki, mais d'autres hôtes incluent le catalpa, le lilas, le troène et le noyer.

Dommage &ndash La cochenille blanche du pêcher se nourrit de l'écorce, des fruits ou des feuilles de la plante hôte. Son alimentation peut provoquer un rabougrissement, la chute des feuilles et la mort de branches entières.

L'histoire de la vie &ndash Hivernant à l'état de femelles adultes, les écailles blanches du pêcher deviennent actives au printemps et commencent à déposer leurs œufs vers le 1er avril dans le sud-est. Les insectes continuent à pondre pendant environ 30 jours. Les œufs femelles sont produits avant les œufs mâles pendant la séquence de ponte. En 3 ou 4 jours, les œufs éclosent en jeunes nymphes ou chenilles. Les chenilles femelles sont plus actives que leurs homologues mâles. Les chenilles s'installent et commencent à se nourrir dans les 2 jours. Le premier stade nymphal dure 7 ou 8 jours. Le deuxième stade nymphal femelle dure environ 12 jours. L'adulte émerge après la deuxième mue. Les nymphes mâles du deuxième stade muent environ 5 jours après leur première mue, puis sortent de leurs écailles en 7 ou 8 jours en tant qu'adultes. L'émergence de l'écaille mâle et la mue finale de l'écaille femelle coïncident. Après la mue, les écailles mâles meurent dans les 24 heures. Quatorze à 16 jours après l'accouplement, les femelles commencent à pondre. A 25°C, une génération est terminée en 35 à 40 jours. Il y a trois générations par an dans le Sud-Est. Comme la mortalité des première et deuxième générations est élevée, le mouvement de la cochenille vers d'autres plantes se produit principalement au cours de la troisième génération en septembre et octobre.

Étant donné que l'insecte peut se trouver sur la face inférieure des branches, il est important de traiter toutes les zones infestées de la plante. Pour les contrôles chimiques spécifiques, voir les recommandations d'extension de l'état actuel.


Contenu

Cette plante atteint environ 30 à 60 cm (12 à 24 po) de hauteur, avec un maximum de 1 m (3 pi 3 po). La tige est côtelée et glabre, ramifiée à la base. Il a des rosettes basales de feuilles vert foncé brillantes. Les feuilles basales sont pétiolées et lyre-pinnatifides, c'est-à-dire avec un grand lobe terminal et des lobes inférieurs plus petits. Les feuilles caulinaires sont plus petites, ovales, dentées ou lobées. Les fleurs sont portées au printemps en grappes terminales denses au-dessus du feuillage. Ils mesurent 7-9 mm (0,28-0,35 in) de long, avec quatre pétales jaune vif. La période de floraison s'étend d'avril à juillet environ. Le fruit est une gousse d'environ 15-30 mm (0,59-1,18 in).

Les substances chimiques de cette espèce comprennent les saponines, [2] [3] [4] [5] les flavonoïdes, [6] et les glucosinolates. [7] [8]

Il a été publié et décrit pour la première fois par William Aiton dans son 'Hortus Kewensis' Vol.4 à la page 109 en 1812. Certaines références mentionnent Robert Brown (Robert Brown (botaniste, né en 1773)), [9] comme auteur mais il n'y a pas mentions de son nom dans Hortus Kewensis, Aiton est donc considéré comme le bon auteur. [dix]

Il porte divers noms communs, notamment « cresson amer », « cressy-greens », « herb-Barbaras », « Rocket cress », « upland cress », « English wintercress » et « yellow rocket ». [11]

Étymologie Modifier

Le nom de genre Barbarea dérive de Sainte Barbe, patronne des artilleurs et des mineurs, car cette plante était autrefois utilisée pour soigner les blessures causées par les explosions. [12] Le nom latin de l'espèce vulgaris signifie "commun". [13]

Plus B. vulgaris les génotypes sont naturellement résistants à certaines espèces d'insectes qui sont par ailleurs spécialisées dans la famille des crucifères. Dans le cas de la teigne des crucifères (Plutella xylostella) et l'altise Phyllotreta nemorum, la résistance est causée par les saponines. [2] [3] [4] [5] Les glucosinolates tels que la glucobarbarine et la glucobrassicine sont utilisés comme signal pour la ponte par les femelles papillons blancs du chou tels que Pieris rapae. En effet, les larves de ce papillon se développent bien sur cette plante. Les femelles de la teigne des crucifères sont également stimulées par ces produits chimiques, mais les larves meurent à cause de la teneur en saponines qui ne sont apparemment pas détectées par les phalènes. Ce phénomène a été testé pour la lutte biologique contre les insectes : B. vulgaris les plantes sont placées dans un champ et attirent une grande partie de la charge d'œufs de la teigne des crucifères. Comme les larves meurent peu de temps après l'éclosion, ce type de lutte contre les insectes a été nommé « culture piège sans issue ». [14]

Originaire d'Eurasie et d'Afrique du Nord, elle est naturalisée dans de nombreuses régions d'Amérique du Nord et de Nouvelle-Zélande en tant que mauvaise herbe. [11]

Modifier la plage

On le trouve en Afrique du Nord tempérée en Algérie et en Tunisie. Également en Asie, en Afghanistan, en Arménie, en Azerbaïdjan, dans le Caucase, en Chine (dans les provinces du Heilongjiang, du Jiangsu, du Jilin et du Xinjiang), en Géorgie, en Iran, en Irak, au Japon (dans les provinces de Hokkaido, Honshu, Kyushu, Ryukyu Islands et Shikoku ), Kazakhstan, Kirghizistan, Mongolie, Sibérie, Tadjikistan, Turkménistan et Turquie. On le trouve également dans les régions tropicales d'Asie, telles que l'Inde (- dans les provinces du Sikkim, de l'Himachal Pradesh, du Jammu-et-Cachemire, du Tamil Nadu, de l'Uttar Pradesh et de l'Arunachal Pradesh), du Pakistan et du Sri Lanka.

La plante préfère les endroits frais ou humides, au bord des routes, le long des rivières, dans les terres arables, les friches et les docks, ou sur les pentes et les fossés, à une altitude de 0 à 2 500 m (0 à 8 202 pieds) au-dessus du niveau de la mer. [1]

Il préfère également pousser dans les sols siliceux, calcaires, sableux, alluviaux et argileux. [1]

Un type pubescent (le « type P ») a été décrit dans le sud de la Scandinavie et en Russie. Si ce chémotype est rare en Scandinavie, il semble dominant en Russie selon la seule enquête réalisée à ce jour. [15] Ce type a une chimie atypique et est dépourvu de résistance à la teigne des crucifères et à l'altise Phyllotreta nemorum. Le type P appartient morphologiquement à la variété B. vulgaris var. arcuaté, mais peut aussi être identique à la sous-espèce initialement décrite comme Barbarea arcuaté Rchb. ssp. pubescent N. Busch. Dans ce contexte, le type habituel de B. vulgaris var. arcuaté est appelé le "type G" (pour les feuilles glabres (sans poils)). Ce type est signalé comme dominant en Europe centrale. [15] À l'échelle génomique, plus de 22 000 gènes (89 % de ceux testés) présentaient des différences fixes entre les deux types. [16]

Un chémotype avec une teneur en glucosinolates déviante a été décrit en Europe occidentale et centrale et nommé "type NAS" (car il est dominé par le glucosinolate glucoNASturtiin. Ce type a une résistance accrue à certains insectes spécialisés. Dans ce contexte, le chémotype habituel de B. vulgaris est appelé le type "BAR" (car il est dominé par la glucoBARbarine). [17]

Alors que les types P et G diffèrent par de multiples caractéristiques génétiques, chimiques et morphologiques, les types NAS et BAR semblent être une simple variation monogénique. [17] Pour cette raison, il a été suggéré de se référer aux formes NAS et BAR (à partir de la forme de rang botanique le plus bas) et aux types P et G. En effet, des plantes occasionnelles sous forme de NAS en Europe centrale se sont révélées être de type G par un ensemble de marqueurs génétiques. [18]

Les jeunes feuilles peuvent être consommées crues ou cuites. [19] Les bourgeons et les fleurs sont également comestibles. [20] Il peut également être utilisé comme culture-piège sans issue pour la teigne des crucifères, dont la chenille est un ravageur des plantes crucifères comme le chou. [21]


Résumé graphique

Les insectes lépidoptères présentent des couleurs et des motifs remarquablement variés qui ont attiré l'attention des scientifiques depuis des siècles. De nombreuses études sur la couleur des ailes et les caractéristiques des motifs ont donc été menées (Monteiro, 2015). Semblables aux ailes des individus adultes, les larves de lépidoptères présentent des motifs de couleurs variés pour mieux s'adapter à leurs habitats. Cependant, les informations concernant la régulation moléculaire des couleurs et des motifs du corps larvaire sont limitées.

La pigmentation mélanique est un trait variable qui joue un rôle essentiel dans les processus physiologiques et les interactions visuelles, à la fois entre les membres d'une même espèce et entre les membres d'espèces différentes (True, 2003 Wittkopp et Beldade, 2009). Les jaune gène, l'un des gènes de la voie de synthèse de la mélanine, est requis pour la pigmentation noire la protéine Yellow-y est également fortement exprimée dans le développement des cellules épidermiques adultes destinées à produire une pigmentation noire dans Drosophile (Gompel et al., 2005 Walter et al., 1991 Wittkopp et al., 2002a, 2002b). Chez le ver à soie domestique Bombyx mori et le papillon machaon Papilio xuthus, les modèles d'expression de la jaune correspondent à des motifs de pigmentation noire au cours des stades larvaires (Futahashi et al., 2008 Futahashi et Fujiwara, 2007). Futahashi et al. (2008) ont démontré que B. mori jaune-y est responsable du mutant de couleur larvaire spontanée, Chocolat (ch) (Fig. 1A). Par conséquent, il est probable que le jaune gène remplit des fonctions cruciales dans la pigmentation larvaire et les modèles de couleur à travers de larges taxons d'insectes lépidoptères.

Les jaune famille de gènes, y compris jaune, est un groupe vaste et diversifié et représente une famille de gènes en évolution rapide ayant des fonctions pléiotropes en plus de la pigmentation. Le produit protéique de jaune dans le cerveau de Drosophila melanogaster joue un rôle nécessaire dans le comportement normal de la parade nuptiale masculine (Drapeau et al., 2003). Les protéines majeures de la gelée royale (MRJP), qui sont également membres de la jaune famille, ont été isolés du cerveau, des glandes à venin et des tissus à différents stades de développement chez l'abeille, suggérant qu'il s'agit de protéines multifonctionnelles avec des rôles physiologiques et développementaux divers et dépendants du contexte (Drapeau et al., 2006 Peiren et al, 2005 , 2008 Schmitzova et al., 1998). Dans Tribolium castaneum, jaune-f semble être nécessaire pour la sclérotisation de la cuticule adulte, alors que jaune-e a un rôle vital dans l'imperméabilisation, en plus de leurs rôles dans la pigmentation normale (Arakane et al., 2010 Noh et al., 2015). Même si jaune les gènes de la famille semblent avoir des fonctions importantes et pléiotropes, les fonctions physiologiques de jaune les gènes sont en grande partie inconnus.

Le ver-gris du tabac Spodoptera litura est un ravageur polyphage destructeur et a développé une résistance élevée aux insecticides (Sparks et Nauen, 2015). Nous avons considéré S. litura approprié pour étudier les fonctions de la jaune gène pour deux raisons : (1) S. litura a une couleur de corps brun foncé ou noirâtre pendant les derniers stades larvaires (Fig. 1B) ainsi, le S. litura jaune-y devrait jouer un rôle essentiel dans la coloration du corps larvaire et (2) les séquences génomiques entièrement assemblées de S. litura ont été mis à disposition (Cheng et al., 2017).

Bien que l'interférence ARN soit l'une des stratégies les plus connues pour analyser la génomique fonctionnelle, cette technique n'est pas efficace chez les lépidoptères (Terenius et al., 2011). Le système CRISPR/Cas9 (clustered régulièrement interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated protein 9) est un puissant outil d'édition du génome utilisé pour introduire une mutagenèse génique ciblée dans l'ADN génomique (gDNA) par microinjection dans des embryons préblastodermiques et a été largement utilisé chez de nombreux animaux et les plantes (Doudna et Charpentier, 2014 Hsu et al., 2014). Plusieurs études ont récemment rapporté le succès de l'édition de gènes médiée par CRISPR/Cas9 dans S. litura, qui a montré une mutagenèse et une spécificité de cible élevées (Bi et al., 2016, 2019, 2016 Xu et al., 2020 Zhu et al., 2016, 2017). Par conséquent, nous avons adopté le système CRISPR/Cas9 pour élucider les fonctions de jaune dans S. litura.

Dans la présente étude, nous avons d'abord identifié jaune et autre jaune gènes familiaux exprimés dans S. litura. Ensuite, nous avons examiné les modèles d'expression temporelle de jaune pendant les stades de mue larvaire-larvaire. Pour explorer les rôles des S. litura jaune-y gène, une mutagenèse ciblée médiée par CRISPR/Cas9 a été menée, et une jaune souche mutante déficiente a été établie avec succès. Nous avons démontré que la fonction de jaune dans la pigmentation est conservée au cours de l'évolution chez les insectes lépidoptères et a également montré des exigences spécifiques aux espèces et aux tissus de jaune en pigmentation par rapport à celles de B. mori jaune-y mutants. De plus, nous avons constaté que presque aucun des jaune les embryons mutants ont éclos sans aide. Par conséquent, nous avons conclu que S. litura jaune-y a une nouvelle fonction importante dans l'éclosion des œufs en plus de la pigmentation.


Aleurode


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J. H. Robinson/Photo Researchers, Inc.

Les aleurodes se produisent généralement en groupes sur la face inférieure des feuilles. Les adultes de la plupart des espèces ont une apparence similaire et ont la forme de minuscules papillons de nuit. La plupart mesurent moins d'environ 2 mm (0,08 po) de long. Le corps est généralement jaunâtre, mais les insectes paraissent blancs à cause d'une cire farineuse qui recouvre les ailes et le corps.

Les femelles pondent de minuscules œufs oblongs, généralement sur la face inférieure des feuilles. Les œufs éclosent en nymphes jaunâtres oblongues à peine visibles appelées chenilles. Après l'éclosion, les chenilles percent rapidement la plante hôte avec leurs pièces buccales en forme d'aiguille et restent fixées sur la plante jusqu'à l'âge adulte. Les nymphes semi-transparentes deviennent aplaties et ovales après la première mue ou la perte de la peau. Ils sont recouverts d'une sécrétion cireuse et ressemblent à de minuscules cochenilles.

Les nymphes matures deviennent temporairement inactives au cours du dernier stade de croissance. Ce stade est communément appelé nymphe, même si les aleurodes ont une métamorphose incomplète et n'ont pas de véritable stade de nymphe. L'apparence de ces "pupes" est utilisée pour distinguer les espèces d'aleurodes. La couverture nymphale varie de transparente à blanchâtre et peut être lisse ou recouverte d'écailles de cire bouclées.

La plupart des espèces d'aleurodes ont plusieurs générations chaque année, tous les stades étant présents toute l'année sur la même plante hôte dans les régions aux hivers doux. Le temps nécessaire aux aleurodes pour terminer une génération peut varier de plusieurs mois en hiver à quelques semaines en été.

Les aleurodes sucent la sève qui coule, ou phloème, des plantes. Des populations élevées de ces insectes peuvent faire jaunir, se ratatiner et tomber prématurément les feuilles. L'excès de sève ou de miellat sucré excrété par les nymphes accumule la poussière, entraîne la croissance de la fumagine et attire les fourmis. Comme beaucoup d'autres espèces de l'ordre des pucerons et des cigales, les aleurodes peuvent transmettre des virus aux plantes.

La plupart des aleurodes sont rares en raison des contrôles naturels, tels que les guêpes parasites et les coléoptères prédateurs, les punaises et les chrysopes. Les quelques espèces nuisibles se trouvent principalement dans les serres et à l'extérieur dans les régions à hiver doux. L'aleurode des serres est un ravageur commun de nombreuses plantes ornementales, en particulier dans les serres. Elle est parfois contrôlée par le lâcher de guêpes parasites. L'aleurode de la patate douce est un ravageur important de nombreuses grandes cultures agricoles. Les récentes épidémies de cette espèce en Californie et au Texas ont causé des millions de dollars de dégâts. Dans les cas extrêmes, l'air autour des champs infestés peut être rempli de nuages ​​étouffants ressemblant à de la poussière d'aleurodes adultes.

Classification scientifique : Les aleurodes appartiennent à la famille des Aleyrodidae, ordre des Homoptera. L'aleurode des serres est classé comme Trialeurodes vaporariorum et l'aleurode de la patate douce comme Bemisia tabaci.


Quel est cet insecte jaunâtre ? - La biologie

La punaise épineuse est un ravageur occasionnel des plantes ornementales et des arbres fruitiers dans le sud de la Floride. Lors de fortes infestations, les nymphes et les adultes forment des grappes denses autour des rameaux, des branches et même des petits troncs d'arbres. Certains hôtes qui ont été gravement endommagés comprennent Hibiscus sp., houppette (Calliandra spp.), arbre à langue de femme (Albizzia lebbek), et Acacia spp. Jeunes arbres de jacaranda (Jacaranda acutifolia) et poinciana royale (Delonix regia) d'un diamètre de 1,5 à 2 pouces ont été tués par des punaises épineuses dans la région de Tampa. Les troncs étaient si fortement infestés qu'il était difficile de placer un doigt n'importe où sur le tronc sans toucher un spécimen.

La punaise épineuse cause des dommages en perçant les tissus végétaux et en suçant la sève et en faisant des incisions dans la plante pour la ponte. Butcher (1953) a signalé que certains arbres, en particulier certains cassias, ont subi une perte considérable de feuillage, et que les pithecellobiums (Pithécellobium spp.) ont subi une mort générale et étendue des rameaux terminaux. Il a également mentionné que les sécrétions de miellat de punaises épineuses et le développement de la fumagine qui l'accompagnait causaient une nuisance aux propriétaires de maison. Kuitert (1958) a noté que de fortes accumulations de miellat se produisaient parfois sur les automobiles en stationnement.

Figure 1. Punaise épineuse femelle adulte, Umbonia crassicornis (Amyot et Serville). Photographie de Lyle J.Buss, Université de Floride.

Distribution (Retour en haut)

Cette punaise épineuse a été trouvée dans toute l'Amérique du Sud et centrale, au Mexique et dans le sud de la Floride. Les archives de Van Duzee (1917) Umbonia crassicornis en Ohio et en Caroline du Sud sont déroutants. Au mieux, il semblerait qu'il s'agisse d'introductions accidentelles dans lesquelles aucune population naturelle n'a été maintenue. En Floride, à partir de 1962, aucune punaise épineuse n'a été collectée au nord de Winter Haven ou au sud de Florida City selon les dossiers de la Division of Plant Industry et de la University of Florida Agricultural Experiment Station. However, the range of some of the hosts exceeds the range of the thorn bug. The original description in 1843 suggested that Umbonia crassicornis was present in Florida at that time, but this species apparently did not become abundant until the last 15 years. Butcher wrote that his first specimens were obtained in April 1951. In a personal letter, Nov. 7, 1962, Dr. E.G. Kelsheimer said, "Our first experience with the thorn bug was in 1948 at Delray Beach where it was thriving on Pithecellobium sp. At that time it was unknown on the west coast, but the next time it was reported to us from Fort Myers where it apparently came in on nursery stock. From Fort Myers it gradually worked its way up to Bradenton."

Identification (Retour en haut)

Four species of Umbonia are present in the U.S., but they are only found in the subtropical regions (Arnett 2000). The most common is Umbonia crassicornis.

The thorn bug is a variable species as to size, color and structure, particularly the pronotal horn of males. Typically, the adult is about 0.5 inch in length and is green or yellow with reddish lines and brownish markings. Other treehoppers sometimes mistaken for the thorn bug in Florida are the varieties Quadrivittata (Say) and Sagittata (Germar) of Platycotis vittata (Fabrice). These varieties have the pronotal horn, but other varieties of Platycotis vittata do not (Cook 1955).

Figure 2. Adults of the thorn bug, Umbonia crassicornis (Amyot and Serville), showing variation in the species. Females are above, males are below. Photograph by Lyle J.Buss, University of Florida.

The horned specimens exhibit a low, forward-projecting anterior pronotal process as opposed to either the tall, essentially perpendicular horn of the female thorn bug or the high receiving horn of the male. The humeral processes of the thorn bug are larger than those of Platycotis vittata. Platycotis vittata lives primarily on oak (Quercus spp.) in Florida, whereas DPI has no reports of the thorn bug on oak.

Figure 3. Adults and nymph of the thorn bug, Umbonia crassicornis (Amyot and Serville). Males, A-C Female - D Nymph - E. Photograph by Division of Plant Industry.

Biologie (Retour en haut)

Females lay their eggs in the tender bark of twigs and the eggs hatch about 20 days later. The female actively tends her brood or colony, which can number from 15 to 50 individuals. Young nymphs have three horns instead of the one seen on the adults. While four generations occur per year, females lay only a single clutch of eggs. (Johnson and Lyon 1994).

The species has a chemical communication that aids in the defense of the young. This chemical passes between the parent and nymphs, making them distasteful to potential predators (Johnson and Lyon 1994).

Hosts (Back to Top)

In addition to the above species, immatures and adults have been found on wild tamarind (Lysiloma bahamensis), tamarind (Tamarindus indica), Casuarina sp., Crotalaria sp., rayado bundleflower (Desmanthus virgatus), bottle brush (Callistemon sp.), Jerusalem thorn (Parkinsonia aculeata), dwarf date palm (Phoenix roebeleni), and from Steiner traps placed in a variety of trees. Adults have been reported on Agrumes spp., Bidens pilosa, bagpod (Sesbania vesicaria) or (Glottidium vesicarium), avocado fruit (Persea americana), holly (Ilex sp.), lychee (Litchi chinensis), Caesalpinia sp., and Mimosa sp.

Seasonal Distribution (Back to Top)

Adults and nymphs can be found all year. Reports of heavy infestations have been received in all seasons, but probably more have come in during the cooler months. Cyclic phenomena also may play a part.

Gestion (Retour en haut)

Due perhaps to the sporadic nature of the thorn bug, experimental work on the control of this pest is very limited.

Références sélectionnées (Retour en haut)

  • Arnett Jr RH. 2000. American Insects: A handbook of the insects of America north of Mexico. Presse CRC. Boca Raton. 1003 p.
  • Butcher FG. 1953. Unusual abundance of the tree-hopper Umbonia crassicornis A. & S. Florida Entomologist 36: 57-59.
  • Cook Jr PP. 1955. Notes on nomenclature and variation in Platycotis. Pan-Pacific Entomologist 31: 151-154.
  • Goding FW. 1929. The membracidae of South America and the Antilles. IV. Sub-families Hoplophorioninae, Darninae, Smiliinae, Tragopinae (Homoptera). Transactions of the American Entomological Society 55: 202-205.
  • Goding FW. 1930. An injurious membracid. Journal of the New York Entomological Society 38: 47.
  • Johnson WT, Lyon HH. 1994. Insects that feed on trees and shrubs. Cornell University Press. pp. 1-560.
  • Kuitert LC. 1958. Insect pests of ornamental plants. University of Florida Agricultural Experiment Station Gainesville Bulletin 595: 14-15.
  • Maxwell LS. 1959. Handbook of Florida insects and their control. Great Outdoors Publishing Co., St. Petersburg, Florida. p. 33.
  • Van Duzee EP. 1917. Catalogue of the Hemiptera of America north of Mexico, excepting the Aphididae, Coccidae and Aleurodidae. University of California Agricultural Experiment Station Technical Bulletin, Entomology 2: 557-558.

Authors: F.W. Mead (retired), Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Division of Plant Industry and Thomas R. Fasulo, University of Florida.
Originally published as DPI Entomology Circular 8. Updated for this publication.
Photographs: Lyle J. Buss, University of Florida and Division of Plant Industry
Conception Web : Don Wasik, Jane Medley
Publication Number: EENY-175
Publication Date: November 2000. Latest revision: August 2014. Reviewed: December 2017. Reviewed: May 2021.

Une institution de l'égalité des chances
Rédactrice et coordonnatrice des créatures en vedette : Dr. Elena Rhodes, Université de Floride


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